TINCIÓN DE ZIEHL-NEELSEN

1. Objetivo.

Tinción de bacterias ácido-alcohol resistentes para su observación al microscopio.

2. Fundamento.

Esta tinción permite distinguir un grupo de bacterias cuya pared es resistente a la decoloración por una mezcla de ácido y alcohol, son llamadas bacterias ácido-alcohol resistentes (BAAR).

3. Medidas de seguridad.

- Guantes.
- Bata.
- Mechero.

4. Material.

- Porta objetos.
- Torunda.
- Mechero.
- Asa de siembra.
- Rejilla.
- Agua destilada.
- Vaso de precipitado.
- Microscopio.

5. Reactivos y muestra.

- Muestra AAR 1 y 2.
- Fucsina fenicada.
- Alcohol.
- Alcohol - clorhídrico al 3-5%
- Azul de metileno.

6. Protocolo.

1. Preparamos la extensión fijada con calor.
2. Colocamos el porta en la rejilla y cubrimos con fucsina fenicada.
3. Calentamos el porta con una torunda con alcohol 5 minutos. Dejadlo enfriar.
4. Lavamos el porta con agua destilada.
5. Añadimos alcohol - clorhídrico al 3-5% y dejamos 2 minutos.
6. Lavamos con agua destilada y escurrimos.
7. Cubrimos con azul de metileno durante 2 minutos.
8. Lavamos con agua destilada y secamos.
9. Observamos al microscopio.

7. Resultados.

• Muestra AAR1:

En la muestra AAR1 observamos cocos.

• Muestra AAR2:

En la muestra AAR2 observamos bacilos y esporas.